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DAVID PASTRE

dernière mise à jour : 17/04/2012

Statut :

Professeur d'université

Fonction :

Enseignant-Chercheur

Présentation générale

Présentation

Activités de Recherches : « Biophysique cellulaire et moléculaire »

Traduction de l’ARNm des cellules mammifères dans des conditions de stress : les « Stress granules"

Polyamines et dynamique des microtubules

Choc osmotique dans les cellules mammifères

Interactions cellule-cellule via les jonctions communicantes

Microscopie à force atomique : études du cytosquelette et des interactions ADN/protéines

Responsabilités

Responsable de l’équipe « Biophysique moléculaire et cellulaire des acides nucléiques et du cytosquelette »

Laboratoire

Publications

Publications

  1. Macromolecular Crowding Regulates Assembly of mRNA Stress Granules after Osmotic Stress. O. Bounedjah, L. Hamon, P. Savarin, B. Desforges, P.A. Curmi, and D. Pastré. J Biol Chem. 20;287(4):2446-58, 2012.
  2. Gap junctions favor normal rat kidney epithelial cell adaptation to chronic hypertonicity. B. Desforges, P. Savarin, O. Bounedjah, S. Delga, L. Hamon, P.A. Curmi, and D. Pastré. Am J Physiol Cell Physiol 301:C705-716, 2011.
  3. Rapid assembly and collective behavior of microtubule bundles in the presence of polyamines.Hamon, L., P. Savarin, P.A. Curmi, and D. Pastré. Biophys J 101:205-216, 2011.
  4. A central role for polyamines in microtubule assembly in cells. P. Savarin, A. Barbet, S. Delga, V. Joshi, L. Hamon, J. Lefèvre, S. Nakib, J.P. De Bandt, C. Moinard, P.A. Curmi and D. Pastré. Biochem J , 430: 151-159, 2010.
  5. Specific DNA-protein interactions on mica investigated by atomic force microscopy. D. Pastré, L. Hamon, I. Sorel, E. Le Cam, P.A. Curmi, and O. Pietrement. Langmuir, 26, 2618-2623, 2010.
  6. Polyamine sharing between tubulin heterodimers favours microtubule nucleation and elongation via facilitated diffusion. A. Mechulam, K.G. Chernov, E. Mucher, L. Hamon, P.A. Curmi, and D. Pastré. PLoS Comput Biol 5, e1000255, 2009.
  7. Role of microtubules in stress granule assembly: Microtubule dynamical instability favors the formation of micrometric stress granules in cells. K.G. Chernov, A. Barbet, L. Hamon, L.P. Ovchinnikov, P.A. Curmi, and D. Pastré. J Biol Chem, 284, 36569-36580, 2009.
  8. Mica surface promotes the assembly of cytoskeletal protein. L. Hamon, D. Panda, P. Savarin, V. Joshi, Y. Bernhard, E. Mucher, A. Mechulam, P.A. Curmi and  D. Pastré. Langmuir, 25 (6), 3331–3335, 2009.
  9. Atomic force microscopy reveals binding of mRNA to microtubules mediated by two major mRNP proteins YB-1 and PABP. K.G. Chernov, P.A. Curmi, L. Hamon, A. Mechulam, L.P. Ovchinnikov, and D. Pastré. FEBS Lett., 582:2875-81, 2008.
  10. YB-1 promotes microtubule assembly in vitro through interaction with tubulin and microtubules.K. G. Chernov, A. Mechulam, N.V. Popova, D. Pastré, E.S. Nadezhdina, O.V. Skabkina, N.A. Shanina, V.D. Vasiliev, A. Tarrade, J. Melki, P.A. Curmi. BMC Biochem 9, 23, 2008.
  11. High-resolution AFM imaging of single-stranded DNA-binding (SSB) protein/DNA complexes. L. Hamon, D. Pastré, P. Dupaigne, C. Le Breton, E. Le Cam, O. Piétrement. Nucleic Acids Research35 (8), e58, 2007.
  12. Atomic force microscopy imaging of DNA under macromolecular crowding conditions.D. Pastré, L. Hamon, A. Mechulam, I. Sorel, S. Baconnais, P. Curmi, E. Le Cam, O. Pietrement. Biomacromolecules, 8, 3712-3717, 2007.
  13. A new approach to DNA bending by polyamines and its implication in DNA condensation. D. Pastré, O. Pietrement, F. Landousy, L. Hamon, I. Sorel, MO. David, E. Delain, A. Zozime, E. Le Cam. Eur. Biophys. J. 35:214-223, 2006.
  14. Polyelectrolyte adsorption on mica mediated by multivalent cations : a solution to DNA imaging by atomic force microscopy under high ionic strength.D. Pastré, L. Hamon, F. Landousy, I. Sorel, M.O. David, A. Zozime, E. Le Cam, O. Pietrement. Langmuir, 22 (15), 6651-6660, 2006.
  15. The EcoRI-DNA Complex as a Model for Investigating Protein-DNA Interactions by Atomic Force Microscopy. I. Sorel, O. Piétrement, L. Hamon, S. Baconnais, E. Le Cam, D. Pastré. Biochemistry, 45 (49), 14675-14682, 2006.

Enseignements

Enseignements

Enseignement (Formations, responsabilités pédagogiques…)

Enseignements de biophysique en licence et master à l’université  d’Evry

Coresponsable du Master 1-SGO, Université d’Evry

Curriculum vitae

Formations

Situation Actuelle :

Professeur des Universités en Biophysique., « Biophysique cellulaire et moléculaires ».

Cursus :

2007, Habilitation à Diriger des Recherches, Université d’Evry, Laboratoire Structure et Activité des Biomolécules Normales et Pathologiques, « DNA adsorption on mica ».

2000-2001, Post-doctorat, University of Virginia, USA, Laboratoire de Biophysique, Direction: Prof. Zifeng Shao. Sujet : « Microscopie à courant ionique en champ proche » 

1999-2000, Scientifique du contingent, Laboratoire Thomson, Sujet : « Caractérisation de composants électroniques par microscopie thermique en champ proche ».

1996–1999, Thèse de Doctorat, Université de Reims, Direction : Prof. Michel Troyon. Sujet : "Cathodoluminescence en champ proche optique." Soutenue le 8 Juin 1999. Spécialité : Sciences Physiques, Félicitations du Jury.

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