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PATRICK CURMI

dernière mise à jour : 17/09/2015

Fonction :

Chercheur

Présentation générale

Présentation

Activités de Recherches 
  • Structure et fonction du cytosquelette eucaryote: aspects moléculaires, biochimiques et cellulaires.
  • Etude de partenaires de la tubuline/des microtubules : protéines, peptides, agents pharmacologiques et substances naturelles dans ce système. Intérêt pour le cycle cellulaire, le cancer et les neuropathologies.
  • Fabrication de nanoparticules de diamant à fluorescence permanente pour le marquage en biologie/médecine.

Responsabilités

Président de l'Université Evry Val d’Essonne

Laboratoire

Publications

Publications

  1. The state of the guanosine nucleotide allosterically affects the interfaces of tubuline in protofilament. J.R. André, M.J. Clément, E. Adjadj, F. Toma, P.A. Curmi, P. Manivet J Comput Aided Mol Des, 2012 sous presse.
  2. Effect of the multifunctional proteins RPA, YB-1, and XPC repair faction on AP site cleavage by DNA glycosylase NEIL1. P. Pestryakov, D.O. Zharkov, I. Grin, E.E. Fomina, E.R. Kim, L. Hamon, I.A. Eliseeva, I.O. Petruseva, P.A. Curmi, L.P. Ovchinnikov, O.I. Lavrik. J Mol Recognit 25:224-233, 2012.
  3. Macromolecular crowding regulates assembly of mRNA stress granules after osmotic  stress: new role for compatible osmolytes. O. Bounedjah, L. Hamon, P. Savarin, B. Desforges, P.A. Curmi, D. Pastré. J Biol Chem. 287(4):2446-58, 2012.
  4. Rapid assembly and collective behavior of microtubule bundles in the presence of polyamines. L. Hamon, P. Savarin, P.A. Curmi, D. Pastré. Biophys J. 101(1):205-16, 2011.
  5. Gap junctions favor normal rat kidney epithelial cell adaptation to chronic hypertonicity. B. Desforges, P. Savarin, O. Bounedjah, S. Delga, L. Hamon, P.A. Curmi, D. Pastré. Am J Physiol Cell Physiol. 301(3):C705-16, 2011.
  6. Benomyl and colchicine synergistically inhibit cell proliferation and mitosis: evidence of distinct binding sites for these agents in tubulin. M.J. Clément, K. Rathinasamy, E. Adjadj, F. Toma, P.A. Curmi, D. Panda. Biochemistry. 47(49):13016-25, 2008.
  7. Polyamine sharing between tubulin dimers favours microtubule nucleation and elongation via facilitated diffusion. A. Mechulam, K.G. Chernov, E. Mucher, L. Hamon, P.A. Curmi, D. Pastré. PLoS Comput Biol. 5(1):e1000255. Epub 2009.
  8. The PN2-3 domain of centrosomal P4.1-associated protein implements a novel mechanism for tubulin sequestration. A. Cormier, M.J. Clément, M. Knossow, S. Lachkar, P. Savarin, F. Toma, A. Sobel, B. Gigant, P.A. Curmi. J Biol Chem. 284(11):6909-17, 2009.
  9. Mica surface promotes the assembly of cytoskeletal proteins. L. Hamon, D. Panda, P. Savarin, V. Joshi, J. Bernhard, E. Mucher, A. Mechulam, P.A. Curmi, D. Pastré. Langmuir. 25(6):3331-5, 2009.
  10. High yield fabrication of fluorescent nanodiamonds. J.P. Boudou, P.A. Curmi, F. Jelezko, J. Wrachtrup, P. Aubert, M. Sennour, G. Balasubramanian, R. Reuter, A. Thorel, E. Gaffet. Nanotechnology. 20(23):235602, 2009.
  11. Fluorescence and Spin Properties of Defects in Single Digit Nanodiamonds. J. Tisler, G. Balasubramanian, B. Naydenov, R. Kolesov, B. Grotz, R. Reuter, J.P. Boudou, P.A. Curmi, M. Sennour, A. Thorel, M. Bòˆrsch, K. Aulenbacher, R. Erdmann, P.R. Hemmer, F. Jelezko, J. Wrachtrup. ACS Nano. 3(7):1959-1965, 2009.
  12. The stathmin-derived I19L peptide interacts with FtsZ and alters its bundling. M.J. Clément, B.T. Kuoch, T. Ha-Duong, V. Joshi, L. Hamon, F. Toma, P.A. Curmi, P. Savarin. Biochemistry. 48(41):9734-44, 2009.
  13. Role of microtubules in stress granule assembly: microtubule dynamical instability favors the formation of micrometric stress granules in cells. K.G. Chernov, A. Barbet, L. Hamon, L.P. Ovchinnikov, P.A. Curmi, D. Pastré. J Biol Chem. 284(52):36569-80, 2009.
  14. Photoluminescent diamond nanoparticles for cell labeling: study of the uptake mechanism in mammalian cells. O. Faklaris, V. Joshi, T. Irinopoulou, P. Tauc, M. Sennour, H. Girard, C. Gesset, J.C. Arnault, A. Thorel, J.P. Boudou, P.A. Curmi, F. Treussart. ACS Nano. 3(12):3955-62, 2009.
  15. High-resolution imaging of microtubules and cytoskeleton structures by atomic force microscopy. L. Hamon, P.A. Curmi, D. Pastré. Methods Cell Biol. 95:157-74. Review, 2010
  16. Probing interactions of tubulin with small molecules, peptides, and protein fragments by solution nuclear magnetic resonance. M.J. Clément, P. Savarin, E. Adjadj, A. Sobel, F. Toma, P.A. Curmi. Methods Cell Biol. 95:407-47. Review, 2010.
  17. A central role for polyamines in microtubule assembly in cells. P. Savarin, A. Barbet, S. Delga, V. Joshi, L. Hamon, J. Lefevre, S. Nakib, J.P. De Bandt, C. Moinard, P.A. Curmi, D. Pastré. Biochem J. 430(1):151-9, 2010.
  18. Investigation of DNA condensing properties of amphiphilic triblock cationic polymers by atomic force microscopy. N. Lidgi-Guigui, C. Guis, B. Brissault, A. Kichler, C. Leborgne, D. Scherman, S. Labdi, P.A. Curmi. Langmuir. 26(22):17552-7, 2010.
  19. The C terminus of tubulin, a versatile partner for cationic molecules: binding of Tau, polyamines, and calcium. J. Lefèvre, K.G. Chernov, V. Joshi, S. Delga, F. Toma, D. Pastré, P.A. Curmi, P. Savarin. J Biol Chem. 286(4):3065-78, 2011.
  20. NMR characterization and molecular modeling of fucoidan showing the importance of oligosaccharide branching in its anticomplementary activity. M.J. Clément, B. Tissot, L. Chevolot, E. Adjadj, Y. Du, P.A. Curmi, R. Daniel. Glycobiology. 20(7):883-94, 2010.
  21. Drosophila stathmins bind tubulin heterodimers with high and variable stoichiometries. S. Lachkar, M. Lebois, M.O. Steinmetz, A. Guichet, N. Lal, P.A. Curmi, A. Sobel, S. Ozon. J Biol Chem. 285(15):11667-80, 2010.
  22. Specific DNA-protein interactions on mica investigated by atomic force microscopy. D. Pastré, L. Hamon, I. Sorel, E. Le Cam, P.A. Curmi, O. Piétrement. Langmuir. 26(4):2618-23, 2010.
  23. Detection of single photoluminescent diamond nanoparticles incells and study of the internalization pathway. O. Faklaris, D. Garrot, V. Joshi, F. Druon, J.P. Boudou, T. Sauvage, P. Georges, P.A. Curmi, F. Treussart. Small. 4(12):2236-9, 2008.
  24. YB-1 promotes microtubule assembly in vitro through interaction with tubulin and microtubules. K.G. Chernov, A. Mechulam, N.V. Popova, D. Pastré, E.S. Nadezhdina, O.V. Skabkina, N.A. Shanina, V.D. Vasiliev, A. Tarrade, J. Melki, V. Joshi, S. Baconnais, F. Toma, L.P. Ovchinnikov, P.A. Curmi. BMC Biochem. 9:23, 2008.
  25. Both lipid environment and pH are critical for determining physiological solution structure of 3-D-conserved epitopes of the HIV-1 gp41-MPER peptide P1. J. Coutant, H. Yu, M.J. Clément, A. Alfsen, F. Toma, P.A. Curmi, M. Bomsel. FASEB J. 22(12):4338-51, 2008.
  26. Atomic force microscopy reveals binding of mRNA to microtubules mediated by two major mRNP proteins YB-1 and PABP. K.G. Chernov, P.A. Curmi, L. Hamon, A. Mechulam, L.P. Ovchinnikov, D. Pastré. FEBS Lett. 582(19):2875-81, 2008.
  27. NMR solution structure of neurotensin in membrane-mimetic environments: molecular basis for neurotensin receptor recognition. J. Coutant, P.A. Curmi, F. Toma, J.P. Monti. Biochemistry. 46(19):5656-63, 2007.
  28. Atomic force microscopy imaging of DNA under macromolecular crowding conditions. D. Pastré, L. Hamon, A. Mechulam, I. Sorel, S. Baconnais, P.A. Curmi, E. Le Cam, O. Piétrement.  Biomacromolecules. 8(12):3712-7, 2007.

Curriculum vitae

Formations

Médecin, Docteur es Sciences

Directeur du laboratoire : Structure et Activité des Biomolécules Normales et Pathologiques.

1er Vice Président du Conseil Scientifique, Université Evry Val d’Essonne 

A la suite de son doctorat en médecine, Patrick Curmi s’oriente au milieu des années 1980 vers la recherche fondamentale. Durant sa thèse de science, il travaille avec Alain Tedgui sur les processus biochimiques et biophysiques contribuant au développement des maladies cardiovasculaires. Il souligne ainsi l’importance de récepteurs spécialisés dans le métabolisme des lipides au sein des parois vasculaires et propose un processus pour comprendre l’effet délétère de l’hypertension artérielle sur le développement de ces affections. Après un post-doctorat en biologie moléculaire sous la direction d’André Sobel, il met au point les conditions qui vont permettre de découvrir en 2000 la structure atomique de la tubuline, protéine indispensable à la division cellulaire et à de nombreux processus morphogénétique et de communication intracellulaire. Convaincu de l’importance de la pluridisciplinarité dans la recherche en biologie/médecine, il coordonne au milieu des années 2000 un réseau européen rassemblant des spécialistes des matériaux, des photophysiciens, des chimistes et des biologistes pour fabriquer et étudier des nanoparticules fluorescentes de diamant afin de les utiliser comme marqueur polyvalent et permanent en biologie/médecine. Le laboratoire SABNP poursuit ces recherches sur la structure atomique de protéines d’importance pour l’homme et les travaux à la frontière entre nanoscience et biologie.

Auteur d’un grand nombre de publications internationales de premier plan, Patrick Curmi est membre du conseil de direction du Neuropole Francilien et expert pour de nombreuses revues internationales à comité de lecture.

REALISATIONS

Nanoparticules de Diamant Fluorescentes 2006

Peptides anti-microtubules 2005

Structure Atomique de complexes tubuline : stathmine à 3.5Å, et détermination des sites de fixation de la colchicine et de la vinblastine 2000-05

STMN4, un gène spécifique du système nerveux chez l’homme, 2000-03

Structure Atomique de complexes tubuline : stathmine à 4Å, 1997-00

Identification de domaines structuraux de la stathmine, 1998-99

La stathmine séquestre la tubuline, 1996-97

Un sous-groupe de cancers du sein surexprime la stathmine, 1994-00

Caractérisation Moléculaire de la Stathmine, 1991-93 (Post-Doct)

L’Hypertension artérielle augmente le dépôt de lipides dans la paroi artérielle, 1986-90 (Doctorat en Sciences)

Les récepteurs LDL participent à l’épuration des LDLs dans la paroi artérielle, 1986-90  (Doctorat en Sciences)

Responsabilités

Referee pour

EMBO reports, BBA, BBRC, J. Cell Biology, Molecular Brain Research, Biochemistry, J. Nanoparticle Res., JACS

Sociétés et Conseils

  • Depuis 2012
    • 1er Vice-Président du Conseil Scientifique de l’Université d’Evry-Val-d’Essonne
  • Depuis 2008         
    • Membre du Conseil de Direction du Neuropôle Francilien (NeRF)
    • Membre du Conseil Scientifique joint des associations AFAF/CSC/ASL (Ataxie Friedreich, Connaitre les Syndromes Cérébelleux, Association Strümpel Lorrain)
  • Depuis 2005
    • Membre de la Commission des Finances Université Evry-Val d’Essonne
  •  2004-2011
    • Membre du Conseil Scientifique Université Evry-Val d’Essonne
Domaines d'expertise

 Biochimistry / Microtubules / Cancer / Neuropathologies / Nanoparticules / Nanomédecine / in silico Drug Design

Parcours professionnel

  • Président de l'Université d'Evry Val d'Essonne
  • 1er Vice Président du Conseil Scientifique, Université d'Evry Val d'Essonne, 2012
  • Directeur INSERM/UEVE U829 depuis janvier 2007. 
  • Directeur Laboratoire Structure et Reconnaissance des Biomolécules, UEVE 2006.
  • Coordinateur Scientifique réseau Européen « Nano4Drugs » 2006-2008.
  • Responsable d’Equipe  ATIGE Genopole, Laboratoire Structure et Reconnaissance des Biomolécules, Evry, 91, 2004-2006.o    " Microtubules, Cycle cellulaire, Fonction neuronale"
  • Responsable d’Equipe, INSERM U440, Paris, 2000-2004. o    " Interaction Moléculaires et Signalisation Intracellulaire".
  • Chargé de recherche INSERM, équipe André Sobel, INSERM U440, Paris, 1994-2000.
  • Post-Doctorat, INSERM U153, Paris, 1991-1993. o    “Régulation & Différenciation Cellulaires”.
  • Chargé de recherche INSERM, (1990), Unité 141, Paris. “Atherosclerosis, LDL receptors in the arterial wall”.
  • Doctorat en Sciences, INSERM U141, Paris, « LDL receptors in the arterial wall » 1985-1991
  • Doctorat en Médecine, 1985
  • Faisant fonction d'interne en médecine, Hôpital Broussais, Paris, 1983-1984

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